cocos y bacilos

COCOS :
Coco, tipo morfológico de bacteria, tiene forma más o menos esférica.

Diplococo: estos cocos se dividen en un sólo plano formando parejas, y dan la impresión de un grano de café, entre éstos podemos citar a los meningococos y gonococos.

Algunos ocasionan enfermedades a los humanos como por ejemplos el neumococo y el estafilococo, tambien es causante de enfermendades como el de la meningitis, otros resultan inocuos o incluso beneficiosos.

Los cocos se dividen en:

-Diplococos: Son pares.

-Estreptococos: En cadena.

-Estafilococos: En racimo.

-Tetradas: En número de 4.

-Sarcinas: En paquetes.

BACILOS:

Los bacilos son bacterias que tienen forma de bastón, cuando se observan al microscopio.

Los bacilos se suelen dividir en:

-Bacilos Gram positivos: fijan el violeta de genciana (tinción de Gram) en la pared celular porque carecen de capa de lipopolisacárido.

-Bacilos Gram negativos: no fijan el violeta de genciana porque poseen la capa de lipopolisacárido.

-Bacilos Gram negativos: no fijan el violeta de genciana porque poseen la capa de lipopolisacárido.

Aunque muchos bacilos son patógenos para el ser humano, algunos no hacen daño, pues son los encargados de producir algunos productos lácteos como el yogurt, a lo largo de la historia de la medicina y de la microbiología, según se iban descubriendo los bacilos, adoptaban el nombre del médico que los descubría como por ejemplo:

-Bacilo de Abel: Klebsiella ozaenae

-Bacilo de Achalme: B. perfrigens

-Bacilo de Aertrycke: Salmonella

-Bacilo de Bang: B. abortus

-Bacilo de Ducrey: H. ducreyi

-Bacilo de Eberth: S. typhi

-Bacilo de Hansen: M. leprae

-Bacilo de Klebs-Löffler: C. Bracillae

-Bacilo de Koch: M. tuberculosis

-Bacilo de Morax: Género Moraxella

-Bacilo de Yersin: Y. pestis

Practica # 1

Practica #1 Realizacion de medios de cultivo.

En esta práctica que se va a realizar se toma en cuenta las 3 etapas que se refieren a pranalitoca, analitica y postanalitica. Las cuales se deben compaginar con la práctica secuencial.

Istrucciones:
1.- El alumno de laboratorio de analisis clínico debe de estar puntual con su equipo de bioseguridad en el laboratorio.
2- solicitar vale de material para que se habiliten todos los materiales a utilizar en la práctica de medio de cultivo.
3.- Una vez estando dentro de laboratorio de forma muy primordial los integrantes de las mesas a trabajar deberán habilitar el equipo de esterilización “autoclave” el cual se debe cargar con agua destilada.
4.- Vestir mesa de laboratorio con papel blanco.
5.-Habilitar línea de gas Lp. Cualquiera de los integrantes debe de abrir la válvula de gas para el mantenimiento de la línea, verificarlo que las de cada mesa estén abiertas las cuales se encuentran debajo de la misma.

Desarrollo:
Para realizar un medio de cultivo requrimos de los siguientes materiales:
-Matraz de 50 ml.
-Vaso de precipitado de 250 ml.
-Vaso de precipitado de 50 ml.
-Varilla de cristal como agitador
-Cajas petri de 5 a 8
-Espátula
-Balanza
-Masking tape
-Envudo de cristal
-Torundas de algodón
-Papel secante
-Medio de cultivo en polvo 450 gr.
-Agua destilada.
Rehidratamos según las indicaciones que están presentes en la etiqueta del medio de cultivo la cantidad necesaria de polvo reactivo para la elaboración de 5 a 8 cajas petrien las que se debe utilizar agua destilada, para poder rehidratar el polvo del medio de cultivo necesitamos manejar una regla de 3 la cual nos ayudara a sacar el % en gr. pesamos el medio de cultivo en polvo que vallamos a utilizar usando el vidrio de reloj una ves pesado el polvo se mezcla con a agua solicitada en as 5 a 8 cajas, para poder mezclar utilizamos el matraz.
En su caso dado con un vaso de precipitado, agitando con la varilla de cristal para que no queden grumos una ves terminado este proceso de agitación y mezcla dejamos reposar el tiempo que nos marque el medio de cultivo. En este espacio de tiempo todo el equipo concensaran sus notas del desarrollo.
Una ves reposado el producto se tienen ya listos los mecheros de bunsen para poder realizar el proceso de ebullición el cual se le dará un min. De tiempo desde que este empiece a a iniciar, se realiza un peqeño giro de muñequeo por encima de la flama azul del mechero siendo muy cuidadoso en que el producto no se derrame ya que puede ocasionar quemaduras de segundo grado.
Se muñequea y se observa el hervor, se retira cuidadosamente y otra ves tomando el tiempo hasta que se cumpla el min., después se observa, se registra, se deposita en la mesa y se deja enfriar.
Ya estado frió el medio líquido tamponeamos con algodón sellando con tape asegurando bien la boquilla del matraz, etiquetamos con el número de mesa y el nombre del medio de cultivo hora y fechaLos encargados del proceso de esterilización se encargan de los medios y del autoclave.
Una ves terminando el proceso de esterilización se retira el medio de cultivo del autoclave se deposita en los mecheros los cuales forman el campo de esterilización por radiación.
Llenado de caja petri, para realizar el llenado de las cajas, deben de estar en el campo de esterilización si no se contamina.
Con el vaso de precipitado realizamos la actividad de vaseado pero antes esterilizamos la boquilla del vasito. Ya terminado esto, vaseamos la cantidad ala caja.Ya vaseado el material ala caja esta se deja semitapada para que no exista el vapor de agua.
Ya estando solidificado el medio, se tapa, se retira y se asegura con tape para etiquetar con los siguientes datos:
-Nombre del medio de cultivo
-Fecha
-Mesa
-Hora

Practica # 2

Practica # 2 Técnica de esterilización.

Se hace hincapié que los alumnos deben de conocer adecuadamente este tipo de tecnica ya que al realizarla tiene mucho riesgo que pude ocacionar un accidente. Se debe tener lista desde el principio de la practica para ahorrar y agilizar tiempo. Debemos tenerla lista higiénicamente con su agua destilada hasta el ras de las parrillas y seguir las indicaciones de la tecnica de esterilización.

Practica # 3 y # 4

Practica # 3 Siembra de Cajas petri en forma de estrias.

Materiales:
- Cajas petri con medio de cultivo ya elaborado
- Muestras de desechos,(saliva, espacios interdentales, raspado de piel, orina, agua fresca, sangre).
- Asa bacteriologica
-2 Mechero de bunsen
- Vaso de precipitado (con 25 ml. de agua destilada )
- Papel para vestir mesa
- Papel secante-
- Torundas de algodón
- Masking tape.

Desarrollo:
1.- Se realiza la toma de una muestra de desechos para sembrarla en forma de estria en caja petri de la siguiente manera.Con el asa bacteriologica tomamos una pequeña muestra del desecho y sembramos de forma estriada en la caja petri.
2.- El asa bacteriologica se pasa por la flama del mechero para esterilizar y volver a realizar el mismo proceso con otra muestra de desechos.
3.- Una vez sembradas las cajas petri se cierran, se etiquetan aplicando los datos de la muestra y el tipo de estria, nombre de la estria sembrada.
4.- Es importante realizar las siembra en caja petri con barilla de cristal a la cual le damos el nombre de siembra por dispersion.
5.- Una vez etiquetadas las cajas se entregan al encargado o encargada del laboratorio para que se les de entrada al proceso de incubación en la estufa para incubar a 37ºC durante 24, 48, 72 horas.



Practica #4 Observación del desarrollo del microorganismo en medios de cultivo

Materiales:
- Asa bacteriologica
- Mecheros de bunsen
- Vaso de precipitados
- Pie de rey o vernier-
Torundas de algodón secas y alcoholizadas.

Desarrollo:
Las cajas de petri ya sembradas son depositadas en el campo de esterilización que se realiza con los dos mecheros hacia la parte media de la mesa.Una vez teniendo el campo, de esterilización se observan los crecimientos de lñas cajas petri ; se registra, lo observado, se abre la caja petri, se registra el olor que despide lo que crecio, el color que presenta 7y se registra con graficos, dibujos o fotografias .

Practica # 5

Practica # 5 Elaboración de un Frotis.

El alumno debe realizar un Frotis con el producto obtenido en las cajas petri el cual debe ser fino y delgado para poder realizar un proceso de tincion.

Materiales:
- Cajas petri con medio de cultivo
- Asa bacteriologica
- Vaso de precipitados con agua destilada (25 ml.)
- Mecheros de bunsen
- Papel secante

Desarrollo:

Se toma un portaobjetos limpio para poder realizar en su superficie un frotis fresco con el material de la caja petri “bacteriologica”Con el asa bacteriologica se va a realizar un barrido en el porta en sus parte central, esterilizando primero el asa bacteriologica en la flama del mechero al rojo vivo, se retira, se introduce el vaso de precipitado se toma una gota de agua con el asa se introduce al a caja petri sobre las colonias desarrolladas se toma una pequeña muestra y se deposita en el portaobjetos dandole pequeños movimientos de izquierda a derecha para estender el producto obtenido.
Si el frotis se encuentra grueso se vuelve a esterilizar el asa bacteriologica se vuelve a tomar una gota de agua, se deposita en el porta sobre el producto anteriormente depositado y se realiza nuevamente la misma maniobra y asi sucesivamente hasta que quede finalmente delgado, una vez terminado el proceso de barrido realizamos una maniobra sobre la flama del mechero con el mismo porta sin dejarlo fijamente en la flama a esto lo denominamos fijación de frotis por calor seco a fuego directo. Una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tincion de gram.

Practica # 6 y # 7

Practica # 6 Tincion de gram.
Se debe realizar una tincion de gram, en el frotis preparado anteriormente para poder llegar a la observación microscopica de los microorganismos denominados “bacterias” los que observamos en formas de esferas, bastones y espirales. Cave mencionar que en este elemento de observación no podriamos llegar a observar microscópicamente las espirales.

Materiales:
- Caja de petri
- Portaobjetos con frotis
- Algodón seco
- Papel secante
- Mecheros de bunsen
- Aceite de inmersion
- Microscopio.

Desarrollo:
Realizamos el proceso de tincion utilizando la tincion de gram, que anteriormente ya investigamos para aplicar la tecnica correspondiente en la tincion ( 9 pasos con esta tecnica) la que se basa en el tiempo, una vez teñida la lamina de cristal verificamos que no se queme con la tintura por lo que nos sirve el frotis y como resultado debemos elaborar otro frotis, si la laminilla en su termino esta bien teñida acudimos a aplicamos una gota de aceite de inmersion lo montamos en la platina del microscopio lo aseguramos con las pinzas de la platina una vez asegurada realizamos el enfoque en 100X para que nuestra observación microscopica de resultado de poder visualizar las bacterias de formas esfericas y de forma de baston ambas se pueden encontrar en una sola pieza 2, 3, 4 piezas en cadenas largas y agrupadas hasta el tercer plano a estas esferas se les denomina cocos, así mismos los bastones.

Practica #7 Observación microscópica a 100X.

Una vez tenida la laminilla con el frotis se le aplica una gota de aceite de inmersión para poder observar el objetivo en 100X, en este proceso de observación microscópica tenemos la facilidad de poder observar formas esféricas y bacilos los que nos da como resultado observar las coloraciones que se presentan en la tinción de Gram.
La presentación en esferas nos indica que estamos observando bacterias denominadas cocos, donde debemos investigar sus características y nombres de importancia medica, cuando observamos bastoncitos estamos tratando de identificar bacilos donde encontraremos una gran variedad de ellos de forma estructural.

Practica 8 Aglutinacion

ETAPA PREANALITCA.

Materiales:

1) Lamina de cristal para reacciones febriles.

2) Tubo de ensaye con tapon rojo esteril.

3) Palillos de madera.

4) Torundas de algodón alcoholizadas.

5) Centrifuga.

6) Microscopio.

7) Pipeta Pasteur con bulbo.

8) Papel secante.

9) Papel para vestir mesa.

10) Reactivo febriclin.

11) Paciente "sangre fresca".

12) Torniquete.

ANALISIS:

1) Técnica de extracción de sangre "Venopuncion".

2) Separación de paquete sanguíneo y plasma (se ocupa centrifuga).

3) Punteo de plasma en placa de cristal, (pipeteo).

4) Mezclarplasma con reactivo de febriclin para observar la función de aglutinación.

5) Observar macroscopicamente la lamina a trasluz.

6) Observar microscopicamente el proceso de aglutinación en objetivo 10x y 40x

7) Reportar en hoja de laboratorio.